The pemeriksaan najis adalah satu kajian makmal di mana najis (najis) diperiksa untuk mengesan parasit usus. Ini adalah salah satu teknik makmal termudah dan tertua, yang pada awalnya dikembangkan oleh Anton Van Leeuwenhoek pada abad ke-18.
Anton Van Leeuwenhoek, yang dianggap sebagai bapa mikrobiologi, menggunakan kaedah koproparasitoskopi "langsung" untuk memerhatikan kotorannya sendiri dan menerangkan apa yang bertahun-tahun kemudian dikenal sebagai trofozoit Giardia lamblia, sebuah protozoa yang menyerang usus kecil manusia.
Bentuk dewasa Ascaris lumbricoides (Sumber: Wikimedia Commons)
Penyakit parasit mempengaruhi jutaan orang di dunia, terutama di negara-negara miskin atau terbelakang, di mana terdapat keadaan kebersihan yang buruk berkaitan dengan pembuangan kotoran dan penggunaan air yang tercemar.
Diagnosis penyakit ini penting untuk rawatan yang mencukupi, kerana pemeriksaan coproparasitoskopi adalah alat yang sangat diperlukan untuknya. Ini adalah ujian makmal yang mudah, cepat dan murah.
Pemeriksaan najis merangkumi beberapa teknik yang, selain memungkinkan visualisasi langsung dan pengukuran telur, trofozoit, sista, atau larva, memungkinkan struktur mikroorganisma dikenal pasti dan dengan itu dapat mengenal pasti parasit.
Teknik yang digunakan untuk pemeriksaan koproparasitoskopi meliputi teknik pewarnaan metilena biru, kaedah penumpuan, teknik Faust, Richie, teknik pemendapan, dan pemeriksaan langsung, tunggal, atau bersiri.
Telur Ascaris lumbricoides yang tidak dibaja. (Sumber: Pusat Pengendalian dan Pencegahan Penyakit, melalui Wikimedia Commons).
Persampelan
Untuk menjalankan kajian ini, pesakit diminta mengambil sampel tinja segar yang tidak tercemar dengan air kencing, air, darah (haid) atau tanah. Sampel mestilah berukuran walnut atau, jika cair, sekurang-kurangnya isi padu sesuai dengan dua sudu besar.
Pesakit tidak boleh mengambil ubat parasit selama sekurang-kurangnya tiga hari sebelum mengambil sampel atau untuk tempoh yang ditunjukkan oleh doktor mereka. Anda juga tidak boleh menggunakan ubat pencahar.
Sampel hendaklah diletakkan di dalam bekas yang kering, bersudut lebar, atau bekas bekas yang direka khas (tersedia dari farmasi pilihan anda). Sampel harus diletakkan di tempat yang sejuk, tidak boleh didinginkan selama lebih dari 24 jam, dan tidak boleh disimpan di dekat sumber panas atau beku.
Apabila pemeriksaan yang ditunjukkan adalah bersiri, sekurang-kurangnya tiga sampel diperlukan, yang mesti diambil setiap 24 jam atau lebih, seperti yang ditunjukkan oleh doktor. Untuk kes ini, makmal secara amnya menyediakan sekumpulan termos yang mengandungi larutan dengan bahan pengawet.
Sekiranya pesakit melihat "cacing" di dalam tinja, jika mungkin, dia harus memasukkannya ke dalam botol tertutup dengan air dan membawanya ke makmal bersama dengan botol sampel najis.
Botol dengan sampel atau dengan "cacing" mesti dilabel dan dikenali dengan nama pesakit, umurnya, jenis kelaminnya dan tarikh dan masa pengumpulan sampel.
Adalah sangat penting untuk memberi petunjuk kepada pesakit mengenai semua aspek pengambilan dan pengendalian sampel ini, kerana ia bergantung pada apakah unsur-unsur yang mungkin ada dalam sampel tersebut tetap layak untuk diperhatikan, dikenal pasti dan didiagnosis.
Teknik
Terdapat pemeriksaan langsung coproparasitoscopic dan teknik penggantungan dan kepekatan sampel yang digunakan berkali-kali untuk mengelakkan negatif palsu dan memerhatikan sampel yang lebih bersih. Beberapa teknik pewarnaan juga digunakan untuk mengenal pasti parasit tertentu.
Peperiksaan langsung
Pemeriksaan najis langsung, menggunakan teknik jatuhan tertunda, terdiri dari mencairkan sampel najis dengan larutan fisiologi (0,9% NaCl) dan meletakkan setitik larutan ini dalam kesimpulan yang mempunyai slaid terpakai khas. untuk tujuan itu.
Setelah titisan diletakkan di slaid, penutup ditutup dengan penutup dan diperhatikan di bawah mikroskop. Teknik ini membolehkan kita memerhatikan telur dan sista, tetapi juga memungkinkan kita memerhatikan sebarang elemen bergerak seperti flagellate, larva, trophozoites, ciliates, dll.
Teknik penggantungan dan kepekatan
Teknik penggantungan menggunakan larutan yang lebih padat daripada unsur-unsur yang harus diperhatikan, sehingga ini terapung di permukaan cairan dan dapat dikumpulkan, karena tetap tertumpu pada lapisan permukaan larutan.
Teknik ini mempunyai kelebihan yang memungkinkan untuk memiliki sampel serpihan yang cukup bersih, kerana ini, lebih padat, tetap berada di bahagian bawah botol. Kelemahan relatifnya ialah larutan mengecil dan merosakkan mikroorganisma dalam masa yang singkat.
Kaedah ini tidak digunakan untuk telur cacing dan cestode kerana sangat berat dan tidak terapung dalam larutan ini. Mereka digunakan secara meluas untuk mengamati protozoa dalam bentuk tropozoik atau telurnya dan untuk pemerhatian larva seperti Strongyloides stercoralis.
Teknik lain digunakan secara meluas kerana ia tidak mengubah bentuk mikroorganisma dalam sampel dan mudah dan murah adalah teknik pemendapan formalin.
Contoh teknik penumpuan merangkumi teknik Faust's dan Richie.
Teknik yang berbeza yang memungkinkan visualisasi mikroskopik telur, larva atau unsur lain dari parasit usus yang berbeza, digabungkan dengan teknik pewarnaan, memungkinkan pengenalpastian dan diagnosis penyakit ini.
Contoh
Seterusnya, kes klinikal dijelaskan dan beberapa gambar ditunjukkan yang menggambarkan kegunaan pemeriksaan najis untuk diagnosis dan penilaian faedah rawatan.
Telur Trichuris trichuria (Sumber: CDC / Dr. Mae Melvin, Dengan hormat: Perpustakaan Imej Kesihatan Awam melalui Wikimedia Commons)
Seorang pesakit lelaki berusia 18 tahun datang ke pejabat doktor kerana sakit perut kolik, lebih sengit di kawasan periumbilik, loya, dan episod cirit-birit berair.
Ketika menyoal pesakit, doktor mencatat dua poin penting: 1) pesakit melaporkan telah mandi di sebuah tasik di kawasan luar bandar dan 2) dia terkejut kerana najisnya melayang di tandas. Setelah memeriksa pesakit, doktor mengesyaki kehadiran Giardia lamblia.
Kitaran hidup Giardia lamblia (Sumber: LadyofHats via Wikimedia Commons)
Protozoa ini ditempatkan di usus kecil manusia dan mengganggu penyerapan lemak, yang menghasilkan najis yang sangat berminyak dan cenderung mengapung. Pencemaran sering berlaku dari air tercemar di tasik atau sungai di kawasan luar bandar atau dari kolam atau kolam air panas yang tidak dijaga dengan baik.
Giardia lamblia trophozoites (Sumber: Foto oleh Eva Nohýnková, Jabatan Perubatan Tropika, Fakulti Perubatan Pertama, Universiti Charles di Prague dan Hospital Bulovka, Republik Czech. Imej dalam kertas oleh Marie Lipoldova, Makmal Imunologi Molekul dan Selular, Institut Molekul Genetik, Akademi Sains Republik Czech, Prague, Republik Czech melalui Wikimedia Commons)
Doktor memerintahkan pemeriksaan najis dan hasilnya mengesahkan kehadiran Giardia lamblia. Selepas akhir rawatan, pemeriksaan najis lain ditunjukkan, yang mengesahkan ketiadaan sista atau trophozoites Giardia lamblia.
Rujukan
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prevalensi strongyloidiasis di Amerika Latin: tinjauan literatur yang sistematik. Epidemiologi & Jangkitan, 143 (3), 452-460.
- oleh Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Diagnosis. Parasitologi perubatan (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Kegunaan 2 kaedah coproparasitologi dan penggunaannya dalam percubaan terapi antigiardiasis. Jurnal Perubatan Tropika Cuba, 55 (3), 174-178.
- Harga, -DL (2017). Manual prosedur untuk diagnosis parasit usus. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., & Orhan, R. (1984). Kajian kopro-parasitologi pada ahli gusti pasukan kebangsaan. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.